1. 使用不同的启动子：为两个质粒选择不同类型的启动子，避免它们之间的竞争 这个建议是针对以下情况的： 启动子竞争效应：如果两个质粒使用相同或类似的启动子，尤其是强启动子（例如，CMV启动子），它们可能会争夺有限的转录因子和转录机制资源（如RNA聚合酶）。这种情况下，启动子竞争可能导致一个质粒的表达被抑制，从而影响另一个质粒的表达。 例如，如果两个质粒都使用 …

是的，如果哺乳动物细胞同时表达两个质粒，且这两个质粒使用相同的启动子，它们可能会发生表达竞争（expression competition）。这种情况通常会影响两个质粒上基因的表达水平，具体影响程度取决于多个因素。 原因 转录因子的竞争： 启动子区域的转录因子结合位点是有限的。如果两个质粒使用相同的启动子，它们可能会争夺同一批转录因子。这种竞争会导致转录因子 …

在筛选 shRNA 细胞系后，如果你发现 RNA没有变化，但 蛋白水平减少，可能有多种原因。这里有一些可能的解释： 1. 转录后调控（Post-transcriptional regulation） miRNA或其他RNA调控：尽管shRNA能够靶向mRNA并降解其转录产物，细胞内可能存在 miRNA 或其他转录后调控机制（如RNA结合蛋白）影响 mRNA …

细胞培养后转染时，细胞的密度和分布对转染效果有很大影响。如果你观察到中间密度较高，而边缘较稀，可能会对转染效果产生一定的影响，具体情况取决于以下几个因素： 细胞密度： 理想的转染效果通常在细胞处于对数生长期时最好，这时候细胞分裂活跃，且增殖速度较快。细胞密度过低（例如在培养皿的边缘区域）时，细胞之间的接触较少，转染效率通常会较差。相反，密度过高时（例如培养皿 …

可能的原因： 质粒竞争效应： 在共转染过程中，两个质粒可能在转染效率、复制能力或表达资源（如转录因子和核糖体）上竞争。一个质粒可能因此受到抑制，导致其表达量下降。 解决方法： 提高低表达质粒的比例，例如2:1或更高。 尝试使用等摩尔浓度（而非等质量浓度）的质粒来转染。 质粒质量或纯度差异： 低表达质粒可能存在降解、污染或纯化不完全的问题，从而影响其转染效率或 …

实验准备 目标细胞：选择适合慢病毒感染的细胞株（如 HEK293T 或靶细胞）。 病毒稀释：对病毒原液进行一系列梯度稀释（如 10−1，10−2，10−3，10−4）。 感染细胞：将稀释后的病毒感染到目标细胞中，确保设置对照组（未加病毒）。 培养：培养 48-72 小时（根据病毒系统和荧光/抗性蛋白表达时间调整）。 检测方法：检测报告基因表达水平（如荧光蛋白 …

细胞类型： 不同细胞系对慢病毒的感染效率不同。例如，一些细胞对病毒更敏感，需要更低的病毒量和细胞密度。 敏感细胞系（如HEK293T）：种植密度可稍低； 难感染细胞系（如原代细胞）：需要更高密度。 病毒滴度： 如果病毒滴度高，细胞密度可以稍低。 如果病毒滴度较低，建议适当提高种植密度，并配合 增强试剂（如Envirus-LV） 提高感染效率。 LV感染目标： …

在慢病毒感染实验中，12孔板中种植的细胞密度需要根据以下因素优化： 一般种植密度建议： 悬浮细胞： 每孔种植 1×10⁵ 至 2×10⁵ 个细胞。 贴壁细胞： 每孔种植 5×10⁴ 至 1×10⁵ 个细胞。 对于贴壁细胞，建议种植后培养 24小时，让细胞达到约 30%-50% 的汇合度（confluency），然后进行病毒感染。这种密度能确保细胞有充足的分裂 …

在基因转染实验中，共转染的两种质粒通常不一定需要选择不同的载体，但有一些情况下选择不同的载体可能会更有优势： 同源重组和重复序列问题：如果两个质粒使用相同的载体序列，可能会发生同源重组，导致质粒结构不稳定，尤其是在细菌扩增和分离时。这种情况下，选择不同载体可以降低同源重组的风险。 抗性筛选：如果需要通过抗生素筛选两种质粒，最好选择含有不同抗性基因的载体，以便 …

细胞计数是生物学研究和临床实验中常用的技术，用于确定样本中细胞的数量。根据不同的研究需要，细胞计数的方法有很多种。常见的细胞计数方法包括： 1. 显微镜计数法 显微镜计数法是最传统也是最常见的细胞计数方法，通常结合血球计数板（如 Neubauer 血球计数板）进行使用。 步骤： 将细胞悬液稀释到合适浓度。 使用血球计数板，置于显微镜下观察。 根据规则计算视野 …