在慢病毒感染的实验中,通常的做法是,在感染后24小时更换培养液,目的是去除未吸附的病毒和残留的病毒介质,避免对细胞的毒性影响。更换培养液后,细胞会继续培养,通常会保持培养在常规的全培液中。
对于延长观察时间的问题,感染后72小时一般是观察慢病毒感染效果的一个标准时间点,因为大多数慢病毒的转导效率在72小时内达到峰值。尽管感染后24小时更换培养液,但并不意味着必须要将病毒培养至72小时才可以观察效果。实际上,很多实验会在48小时后进行观察或分析。
如果你觉得72小时感染效率低,可以考虑以下几种策略:
- 延长感染时间:如果条件允许,可以在感染后延长至96小时,观察是否能提高转导效率。
- 提高病毒滴度:如果感染效率较低,可以考虑增加病毒的滴度,这可能有助于提高感染率。
- 优化感染条件:比如更改病毒与细胞接触的时间(如增加感染时间),或者通过增加Envirus-LV感染促进剂来提高病毒的感染效率。
- 改变培养基成分:某些实验中可能会使用不同的培养基或调节培LV养基的条件,来改善慢病毒的转导效率。
总结来说,24小时换液是标准做法,但感染后的观察时间可以根据实验需求进行调整。如果你希望提高感染效率,延长观察时间和优化其他感染条件都是可行的策略。